Cultivos auxiliares
Los cultivos auxiliares son los que proporcionan alimento vivo, esencial durante el desarrollo larvario de peces, crustáceos y moluscos. Bajo la denominación de cultivos auxiliares se desarrolla el cultivo de microalgas (Chlorella, Isochrisis o Tetraselmis, entre otras muchas) y de macroinvertebrados (rotíferos, Artemia salina, nemátodos, copépodos, cladóceros, entre otros) destinados a la alimentación de las especies acuáticas susceptibles de cultivo. Son cultivos paralelos a los de especies comerciales.
Uno de los factores limitantes en acuicultura es la obtención y producción de alimentos que cubran las necesidades de las especies que se cultivan para su comercialización. Además, esa producción de alimento, ha de resultar económicamente rentable.
Mientras que en la naturaleza, el desarrollo y supervivencia de larvas y juveniles depende de la presencia de organismos planctónicos, que a su vez se producen cuando hay nutrientes adecuados (cadena trófica),en condiciones de cultivo hay que asegurar el aporte de nutrientes necesarios para que la especie objetivo se desarrolle en las mejores condiciones, por lo que es fundamental conocer la composición química de los alimentos vivos, y, a su vez, el contenido nutricional de las especies utilizadas como alimento vivo está relacionado directamente con su alimento.
Cultivo de microalgas
Al ser organismos autótrofos son el primer eslabón de toda cadena trófica. Son una fuente directa del alimento de muchos animales filtradores (fitófagos) como es el caso de los moluscos, y son el alimento en parte de los ciclos vitales de, por ejemplo, los crustáceos. También son una fuente indirecta de alimento para las larvas de peces carnívoros. En cultivos también se utilizan como base a la producción de zooplancton (rotíferos y Artemia).
Si el cultivo de microalgas se mantenido en unas condiciones físico-químicas adecuadas, en el desarrollo de los huevos y larvas de peces marinos, desempeña un papel de filtro biológico y al mismo tiempo oxigenan el agua, en fases en las que la oxigenación por aireadores se intenta que sea la menor posible.
La producción masiva de microalgas se llevó a cabo por primera vez en Alemania durante la II Guerra Mundial, para la producción de lípidos. Su cultivo se ha desarrollado, existiendo ya unas 40 especies de microalgas utilizadas comúnmente como alimento en acuicultura.
Para su cultivo, las especies de microalgas se suelen seleccionar atendiendo fundamentalmente a su valor alimentario y a su facilidad de cultivo, aunque también es importante el tamaño de la célula, el tipo o naturaleza de la pared celular y la propia composición química.
Cultivo de rotíferos
Los rotíferos pertenecen al filo de los Nematelmintos (orden Monogonontes); son seudocelomados y hay más de 1800 especies, que en su mayoría son de agua dulce; también hay algunas especies marinas y otras terrestres seudocelomados viven sobre musgos húmedos. Son organismos pluricelulares, de pequeño tamaño, visibles a través de microscopio óptico. Tienen un órgano rotatorio, con cilios, que realiza movimientos giratorios creando fuertes corrientes de agua que le sirven para captar su alimento. En general, son formas libres que forman parte del plancton, aunque también hay especies sésiles.
El cuerpo de un rotífero generalmente es transparente, a veces coloreado en la región intestinal. Miden entre 100 micras y 3 mm; los machos son más pequeños y menos desarrollados que las hembras, midiendo algunos tan sólo 60 micras.
El cuerpo de todas las especies presenta un número constante de células, que en el caso del género Brachionus (la especie Brachionus plicatilis es la más importante en acuicultura) es de aproximadamente 1000; esas células no han de considerarse como identidades únicas, sino como un área de plasma; el crecimiento del animal se produce por un aumento de plasma y no por la división de las células.
En el cuerpo de un rotífero se diferencian tres partes:
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cabeza: donde se encuentra el órgano rotatorio o corona rodeando la boca, que es más o menos ventral
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tronco: está el tracto digestivo
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pie: formación anillada retráctil sin segmentación, que termina en uno o cuatro dedos
En su ciclo vital, presentan alternancia en la reproducción (sexual yasexual); hembras partenogenéticas originan nuevas hembras partenogenéticas, pero cuando las condiciones del medio son desfavorables se origina una generación de hembras y machos que se reproducen sexualmente.
El cultivo de Brachionus plicatilis se realiza en agua de mar mesohalina, filtrada a 1 micra y desinfectada con cloruro o con lejía (y neutralizada con tiosulfato sódico).
Su alimentación suele ser con levadura de panificación, en una concentración de 1 g por cada millón de rotíferos (desleída en agua, cada 8 horas). Cuando es necesario, se complementa la levadura con vitaminas (E, B6 y B12) y/o con aceite de pescado. La temperatura óptima de cultivo es de 22 a 25 °C La oxigenación ha de aportar al menos un 80 % de saturación, sin producir excesivo burbujeo. El pH debe mantenerse en torno de 7.5, porque a mayor pH menor producción y a menor pH menor fertilidad. El tiempo entre dos generaciones es de aproximadamente tres días.
Cultivo de Artemia
La Artemia es un magnífico alimento vivo en tanto en acuicultura como en acuariofilia, por sus características de desarrollo, su pequeño tamaño de nauplio y metanauplio, que es adecuado para las larvas y juveniles de crustáceos y de peces, y por su fácil manejo. El valor nutritivo de los nauplios recién eclosionados es muy alto, pero decrece rápidamente cuando no disponen de alimento. Se obtiene un enriquecimiento de nutrientes esenciales utilizando un sustrato de microalgas (vivas o secas), o con una mezcla artificial de nutrientes (lípidos, aminoácidos, ácidos grasos, etc.).
Los quistes (huevos de resistencia) de Artemia se comercializan, generalmente deshidratados.
Para iniciar un cultivo de Artemia, los quistes se introducen en agua de mar (hidratación) en unos recipientes preferiblemente cilíndricos para mayor facilidad de aireación, a pequeña concentración (10 g de huevos por L), con iluminación (2.000 lux) durante unos 10 minutos para excitar su actividad metabólica; El agua ha de mantenerse a unos 28 °C de temperatura con aireación fuerte. Con éstas condiciones se logra la eclosión (aparición de las larvas) aproximadamente a las 24 h, siendo normal una tasa de supervivencia de un 80%. Los huevos no eclosionados y las cáscaras restantes de los cistes pueden ser perjudiciales para los peces y crustáceos que los vayan a ingerir, Por lo que es necesario separar los nauplios recién eclosionados; para ello se utiliza su fototropismo (atracción por la luz) o bien se disuelven los restos con productos químicas que no dañen a los nauplios.
También, si se quiere mejorar el coeficiente de eclosión, se recomienda decapsular los quistes. Las cubiertas duras de los quistes pueden eliminarse mediante una exposición de 20 minutos a una solución de hipoclorito de sodio (lejía); posteriormente, hay que hacer un lavado intenso para eliminar los restos de hipoclorito.
Cultivo de microgusano (Panagrellus redivivus)
Es un pequeño "nemátodo" de vida libre, que mide 0,5 x 2 mm, con ciclo de vida corto, que se alimentan de bacterias y levaduras. Se utiliza para la alimentación en etapas larvales tempranas de organismos acuáticos, como peces y crustáceos.
La principal ventaja que tiene es que su cultivo es muy fácil, en pequeños recipientes y con sustratos económicos. La composición general del microgusano es: 76% agua, 24% materia seca, de la cual, 40% es proteína y 20% grasa, el 40% restante corresponde a extracto libre de nitrógeno y algunos micronutrientes. La alta aceptación por parte de las larvas, así como la positiva digestibilidad y excelente valor nutrimental, confirman el potencial como primer alimento larval. A diferencia de Artemia salina, las larvas de P. redivivus no consumen microalgas, pueden sobrevivir más de 72 h en agua dulce y no crecen demasiado como para no poder ser consumidas rápidamente sin llegar a contaminar el agua de acuarios.
La pared celular se une a la toxina y la remueve del cuerpo. La Clórela es muy popular en Japón y es uno de los suplementos más prescritos en el país.
Cultivo de copépodos
1. Consideraciones generales
Los copépodos son crustáceos de pocos milímetros que son considerados entre las alternativas de alimentación en Acuicultura Se han logrado cultivos de Calanoideos (Calanus sp., Acartia sp., etc.) y de Harpacticoideos (un ejemplo es Tigriopus japonicus).
Cultivo de Cladóceros
Los cladóceros son microcrustáceos filtradores de pequeño tamaño que en el caso del género Daphnia varía para los ejemplares adultos entre 1 y 3 mm de longitud. Las características de los cladóceros que los hacen aptos para su empleo en acuicultura derivan de sus múltiples ventajas: pequeño tamaño y ciclo de vida relativamente corto dado que maduran y se reproducen en pocos días, de manera que se cuenta en un tiempo reducido con un número importante de individuos. Debido a que su reproducción puede ser limitada a la producción de hembras por partenogénesis, es posible mantener cultivos con constancia génica. A las anteriores características debemos agregar su valor nutritivo: alrededor de 60% de contenido protéico constituido por proteínas de elevada calidad biológica.
Algunos datos sobre la biología de Daphnia (Anderson y Jenkins, 1942; Hebert, 1978) se resumen a continuación:
Longevidad: entre 910 y 1 030 horas (aproximadamente entre 38 y 43 días)
Alimentación: Daphnia se alimenta de bacterias, hongos, protozoarios y desechos orgánicos.
El alimento es filtrado y concentrado mediante la acción de conjuntos de sedas situados en los apéndices torácicos. Aunque el tamaño promedio de las partículas ingeridas se sitúa entre 1 y 60 u se debe hacer la salvedad que el mismo aumenta con el incremento en la talla del cladócero.
Varios autores han encontrado que los detritos (encapsulados por bacterias) se constituyen en el principal componente de la dieta de Daphnia (Nadin Hurley & Duncan, 1976; Tappa, 1965) siendo las microalgas importantes sólo durante el período de floraciones (“blooms”) (Nadin Hurley & Duncan, 1976).
Aquí cabe recordar el concepto de detrito el cual engloba a todo tipo de material biogénico en varias etapas de descomposición microbiana (Darnell, 1964). Algunos de los métodos más exitosos y antiguos en acuicultura emplean guanos animales los cuales por la acción de los microorganismos del agua se convierten en detritos, incrementándose sustancialmente la productividad natural del ambiente.
Los guanos animales (vacunos y de aves de corral) constituyen alimentos de muy pobre calidad en el momento en que ingresan al estanque de cultivo. Allí se transforma en un alimento de excelente calidad. Como explicación (Schroeder 1987) se deben tener en cuenta algunos elementos total o parcialmente dilucidados del proceso mediante el cual se produce una sustancial mejora en la calidad nutritiva de los detritos.
En efecto el proceso microbiano tiene lugar en su mayor parte bajo las condiciones anaeróbicas existentes a nivel del sedimento; en este ambiente anóxico la fermentación de la materia orgánica que integra los detritos da como resultado que gran parte del carbón original sea convertido en compuestos orgánicos de bajo peso molecular, existiendo la posibilidad cierta de que los mismos representen un alimento de muy buena calidad para los animales que los ingieran usualmente.
Ejemplos paralelos de procesos en condiciones comparables se dan en el ensilado y en el rumen; en ambos casos también hay producción de materia orgánica en forma de compuestos carbonosos de bajo peso molecular.